Acta Chimica Sinica ›› 2021, Vol. 79 ›› Issue (5): 614-627.DOI: 10.6023/A20120564 Previous Articles Next Articles
Special Issue: 分子探针、纳米生物学与生命分析化学
Review
李琛琛a, 陈慧燕b, 董月红b, 罗细亮a,*(), 胡娟c,*(), 张春阳b,*()
投稿日期:
2020-12-10
发布日期:
2021-01-25
通讯作者:
罗细亮, 胡娟, 张春阳
作者简介:
李琛琛, 2020年于山东师范大学获得分析化学博士学位, 现为青岛科技大学化学与分子工程学院副教授. 研究方向为生化分析和单分子检测. |
陈慧燕, 山东师范大学化学化工与材料科学学院2018级硕士研究生, 研究方向为生物分析化学和单分子检测技术. |
董月红, 山东师范大学化学化工与材料科学学院2018级硕士研究生, 主要研究方向为生化分析和化学发光检测. |
罗细亮, 教授, 博士生导师, 国家优秀青年基金获得者, 山东省泰山学者特聘教授. 2005年于南京大学获得分析化学博士学位, 随后在爱尔兰都柏林城市大学、美国亚利桑那州立大学和匹兹堡大学从事博士后研究. 先后获批为欧盟玛丽居里学者、匹兹堡大学研究助理教授. 2011年加入青岛科技大学, 现任化学与分子工程学院院长、光电传感与生命分析教育部重点实验室主任. 主要研究方向为生化分析、光电传感和纳米生物复合材料. |
胡娟, 上岗研究员, 硕士生导师. 2019年在山东师范大学获博士学位. 2009~2020年先后在中国科学院深圳先进技术研究院和山东师范大学工作, 现在东南大学化学化工学院工作. 主要研究方向为生物传感和单分子检测. |
张春阳, 教授, 博士生导师, 中国科学院“百人计划”入选者, 国家杰出青年科学基金获得者, 国家“万人计划”科技创新领军人才, 国务院政府特殊津贴专家. 1999年在北京大学获博士学位, 随后在清华大学完成博士后研究. 2001年赴美, 先后在埃默里大学、约翰霍普金斯大学和纽约城市大学工作. 2009年回国加入中国科学院深圳先进技术研究院, 现为山东师范大学化学化工与材料科学学院院长. 主要研究方向为生化分析、生物纳米技术、单分子检测与成像. |
基金资助:
Chen-chen Lia, Hui-yan Chenb, Yue-hong Dongb, Xiliang Luoa,*(), Juan Huc,*(), Chun-yang Zhangb,*()
Received:
2020-12-10
Published:
2021-01-25
Contact:
Xiliang Luo, Juan Hu, Chun-yang Zhang
About author:
Supported by:
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Chen-chen Li, Hui-yan Chen, Yue-hong Dong, Xiliang Luo, Juan Hu, Chun-yang Zhang. Advances in Detection of Epigenetic Modification—5-Hydroxymethylcytosine[J]. Acta Chimica Sinica, 2021, 79(5): 614-627.
检测方法 | 适用目标 | 优点 | 缺点 | 参考文献 | |
---|---|---|---|---|---|
液相色谱-质谱联用法 | 检测5hmC总量 | 定量准确、可提供各个组分组成和结构信息 | 无法实现单碱基分辨、需要专业操作经验 | [ | |
荧光法 | 定量检测基因组DNA中的5hmC | 灵敏度高、操作简单 | 无法提供空间定位信息 | [ | |
电化学法 | 定量检测基因组DNA中的5hmC | 设备简单、成本低廉、易于微型化、背景信号低、灵敏度高 | 选择性较差、耗时长 | [ | |
电致化学发光法 | 5hmC的定量 | 化学势可控、灵敏度高、背景信号低、重现性好, 响应快速 | 存在电极表面污染问题、背景信号高、耗时长 | [ | |
光电化学法 | 5hmC的定量 | 成本低、操作简单、背景电流小、检测灵敏度高 | 不能检测人体基因组中的5hmC | [ | |
沉淀法 | GLIB | 5hmC DNA片段的分离和富集 | 不需要PCR扩增 | 反应时间较长、测序价格昂贵 | [ |
CMS | 富集5hmC、全基因组定位 | 对5hmC丰度依赖性较低 | 需亚硫酸氢盐处理和特异性抗体、无法实现单碱基分辨 | [ | |
JBP1 | 全基因组定位、解析5hmC在基因序列中的分布 | 简单直接、快速、高效 | 捕获效率低、灵敏度差 | [ | |
hMeDIP | 全基因组定位、解析5hmC在基因序列中的分布 | 不需要PCR 扩增、单分子实时测序、成本低 | 有一定的序列偏好、无法实现单碱基分辨 | [ | |
亚硫酸氢盐测序及其衍生法 | BS-Seq | 全局和局部量化 | 适用于基因组的分析 | 亚硫酸氢盐处理可能导致DNA降解、不能区分5hmC和5mC | [ |
TAB-Seq | 全基因组测序和位点特异性测序 | 高效、单碱基分辨率 | 依赖于苛刻的化学反应, 导致DNA损失较多; 将所有未甲基化的C转换为U会严重降低序列复杂性, 导致测序质量差、定位率低、基因组覆盖不均、测序成本高 | [ | |
oxBS-Seq | 解析5hmC在基因序列中的精确定位 | 单碱基分辨率、可确定 5hmC和5mC精确位置、可与测序平台兼容 | 依赖于苛刻的化学反应, 导致DNA损失较多; 将所有未甲基化的C转换为U会严重降低序列复杂性, 导致测序质量差、定位率低、基因组覆盖不均、测序成本高 | [ | |
检测方法 | 适用目标 | 优点 | 缺点 | 参考文献 | |
TAPS | 全基因组碱基水平分辨率的5hmC检测 | 非破坏性、高灵敏度和特异性 | 依赖于TET的活性; TET不是100%有效, 且成本高 | [ | |
CAM-Seq | 定量检测基因组DNA中的5hmC | 不使用亚硫酸氢盐、具有单碱基分辨率的能力 | 氧化条件非常苛刻 | [ | |
hmC-CATCH | 定量检测基因组DNA中的5hmC | 反应条件温和、无DNA降解发生、成本低 | 具有PCR偏向性 | [ | |
其他 | 5hmC在基因组中的分布 | 无位置倾向性、灵敏度高, 适用于微量样本和低丰度胞嘧啶修饰的分析 | 准确度差 | [ | |
单分子检测技术 | SMRT | 解析5hmC在基因序列中的精确定位、全局定量分析 | 不需要扩增DNA、有效降低了扩增反应对修饰位点的影响 | 碱基识别错误率较高、测序价格昂贵 | [ |
纳米孔传感 | 解析5hmC在基因序列中的精确定位、全局定量分析 | 不需要限制性内切酶、不需要羟甲基化位点的序列信息、可在样本序列信息未知的情况下检测DNA中任意5hmC | 没有应用于定量基因组DNA样品中的5hmC | [ | |
单分子成像 | 解析5hmC在基因序列中的精确定位、全局定量分析 | 可以提供空间定位信息 | 需要标记技术 | [ |
检测方法 | 适用目标 | 优点 | 缺点 | 参考文献 | |
---|---|---|---|---|---|
液相色谱-质谱联用法 | 检测5hmC总量 | 定量准确、可提供各个组分组成和结构信息 | 无法实现单碱基分辨、需要专业操作经验 | [ | |
荧光法 | 定量检测基因组DNA中的5hmC | 灵敏度高、操作简单 | 无法提供空间定位信息 | [ | |
电化学法 | 定量检测基因组DNA中的5hmC | 设备简单、成本低廉、易于微型化、背景信号低、灵敏度高 | 选择性较差、耗时长 | [ | |
电致化学发光法 | 5hmC的定量 | 化学势可控、灵敏度高、背景信号低、重现性好, 响应快速 | 存在电极表面污染问题、背景信号高、耗时长 | [ | |
光电化学法 | 5hmC的定量 | 成本低、操作简单、背景电流小、检测灵敏度高 | 不能检测人体基因组中的5hmC | [ | |
沉淀法 | GLIB | 5hmC DNA片段的分离和富集 | 不需要PCR扩增 | 反应时间较长、测序价格昂贵 | [ |
CMS | 富集5hmC、全基因组定位 | 对5hmC丰度依赖性较低 | 需亚硫酸氢盐处理和特异性抗体、无法实现单碱基分辨 | [ | |
JBP1 | 全基因组定位、解析5hmC在基因序列中的分布 | 简单直接、快速、高效 | 捕获效率低、灵敏度差 | [ | |
hMeDIP | 全基因组定位、解析5hmC在基因序列中的分布 | 不需要PCR 扩增、单分子实时测序、成本低 | 有一定的序列偏好、无法实现单碱基分辨 | [ | |
亚硫酸氢盐测序及其衍生法 | BS-Seq | 全局和局部量化 | 适用于基因组的分析 | 亚硫酸氢盐处理可能导致DNA降解、不能区分5hmC和5mC | [ |
TAB-Seq | 全基因组测序和位点特异性测序 | 高效、单碱基分辨率 | 依赖于苛刻的化学反应, 导致DNA损失较多; 将所有未甲基化的C转换为U会严重降低序列复杂性, 导致测序质量差、定位率低、基因组覆盖不均、测序成本高 | [ | |
oxBS-Seq | 解析5hmC在基因序列中的精确定位 | 单碱基分辨率、可确定 5hmC和5mC精确位置、可与测序平台兼容 | 依赖于苛刻的化学反应, 导致DNA损失较多; 将所有未甲基化的C转换为U会严重降低序列复杂性, 导致测序质量差、定位率低、基因组覆盖不均、测序成本高 | [ | |
检测方法 | 适用目标 | 优点 | 缺点 | 参考文献 | |
TAPS | 全基因组碱基水平分辨率的5hmC检测 | 非破坏性、高灵敏度和特异性 | 依赖于TET的活性; TET不是100%有效, 且成本高 | [ | |
CAM-Seq | 定量检测基因组DNA中的5hmC | 不使用亚硫酸氢盐、具有单碱基分辨率的能力 | 氧化条件非常苛刻 | [ | |
hmC-CATCH | 定量检测基因组DNA中的5hmC | 反应条件温和、无DNA降解发生、成本低 | 具有PCR偏向性 | [ | |
其他 | 5hmC在基因组中的分布 | 无位置倾向性、灵敏度高, 适用于微量样本和低丰度胞嘧啶修饰的分析 | 准确度差 | [ | |
单分子检测技术 | SMRT | 解析5hmC在基因序列中的精确定位、全局定量分析 | 不需要扩增DNA、有效降低了扩增反应对修饰位点的影响 | 碱基识别错误率较高、测序价格昂贵 | [ |
纳米孔传感 | 解析5hmC在基因序列中的精确定位、全局定量分析 | 不需要限制性内切酶、不需要羟甲基化位点的序列信息、可在样本序列信息未知的情况下检测DNA中任意5hmC | 没有应用于定量基因组DNA样品中的5hmC | [ | |
单分子成像 | 解析5hmC在基因序列中的精确定位、全局定量分析 | 可以提供空间定位信息 | 需要标记技术 | [ |
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